EN BUSCA DE LA VITAMINA C

OBJETIVO: Determinar la cantidad de vitamina C (ácido l-ascórbico) que actua como cofactor, antioxidante y se oxida con luz y con oxígeno. Además, emplearemos el almidón como punto de referencia (que con una gota de almidón ya cambia de color de blanco a marrón) y compararlo con los demás.

MATERIALES:

*Naranja, limón, mandarina, naranja (que lleva 2 semanas en la nevera), mirinda, redoxón, minute maid, vaso precipitado, embudo, tubos de ensayo, papel de filtro, pipeta, embolo, lugol y agua destilada. Si no disponemos de almidón podemos emplear ión yodo (I) como indicador ya que al oxidarse se volvera de color violeta.

PROCEDIMIENTO:

Primero, mezclamos agua destilada (150 ml) con almidón ("a ojo")y lo con los tubos de ensayo vamos colocando 2 ml de la disolución anterior, 2ml de jugo, 2ml de mirinda, 2 ml de naranja, 2 ml de redoxón y 2 ml de limón. Después, añadimos 2 ml de almidón en todos los tubos (menos en el que ya habia almidón) y vamos echando gota a gota en cada tubo de ensayo el lugol y calentamos en un vaso de precipitado con agua para acelerar la reacción y tenemos en cuenta que en la disolución de almidón más agua se necesita 1 gota para el cambio de color. Finalmente, en el tubo de ensayo con el jugo 1 gota, en la mirinda 1 gota, en la naranja 1 gota (que al cortarla se oxido muy pronto), en el redoxón 25 gotas de lugol y en el limón 2 gotas.



CONCLUSIÓN: 2 empedimientos: que debimos poner 2 ml más en la disolución de agua más almidón y que debíamos haber cortado la naranja más tarde.

LA SANGRE

OBJETIVO: Determinar el grupo sanguíneo y observar al microscopio un frotis de la sangre.

GRUPO SANGUÍNEO:

MATERIAL:
*Portaobjetos.
*Lancetas estériles y palillos.
*Sueros sanguíneos anti A, anti B y anti Rh (con estos sueros determinaremos el grupo).
*Algodón.
*Alcohol.

PROCEDIMIENTO:

Primero, debemos obtener una muestra de sangre, para ello nos hacemos una punción en la yema del dedo con una de las lancetas, lo apretamos para que gotee y colocamos 3 gotas separadas en el portaobjetos. Después, colocamos sobre la gota de la izquierda una gota de suero anti A, en la del centro el suero anti B y en el de la derecha el suero anti Rh. A continuación, mezclamos bien las gotas con los palillos. Según se produzca aglutinación en una u otra gota, tendremos sangre del tipo A, B, AB, 0, Rh+ o Rh-.



ESTUDIO DE UN FROTIS:

Lo primero es saber como hacer un frotis, para ello cogemos una gota de sangre en el centro de un porta, inmediatamente con otro porta extendemos la muestra usando el borde del otro, procurando extenderla uniformemente. Dejamos secar la muestra al aire y la teñimos con varias gotas de Wright durante 2 minutos. Luego, añadimos el igual número de gotas de agua destilada y la mantenemos así 3 minutos; la lavamos con más agua destilada, añadiendo gota a gota, durante 30 segundos; luego dejamos secar.

Con el frotis ya hecho, pasamos al microscopio a observar los glóbulos rojos(también llamados Hematies con forma aplanada, sin núcleo y con la función de transportar el oxígeno).



Después los glóbulos blancos (algunos mucho más grandes que los hematies y que se dividen en dos grupos : SERIE GRANULOCÍTICA Y SERIE AGRANULOCÍTICA (con granulos o sin granulos, respectivamente).

Si encontramos muchos de estos linfocitos puede deberse a algún tipo de alergia o, encasos graves, leucemia.

PRIMEROS AUXILIOS

OBJETIVO: Aprender como debemos actuar y que debemos hacer en el caso que necesitemos emplear primeros auxilios.

¿Cómo hay que actuar antes de aplicar los primeros auxilios?:

-Ante todo hay que seguir una regla nemotécnica llamada P.A.S. (proteger, alertar y socorrer). Lo primero es evaluar al accidentado (sin que comprometa a nadie, incluyendo al paciente y a nosotros mismos) comprobando la conciencia y la respiración durante 10 segundos con la maniobra frente-mentón (F/M) que consiste en elevar el mentón y comprobar la respiracíón acercando la cara a la naríz del paciente para sentir, ver y oir la respiración.

Luego, observamos si tiene hemorragias severas, para taponarlas, y en caso de parada cardiorespiratoria (PCR). Esta maniobra la debemos aplicar suguiendo unas pautas: proteger, comprobar conciencia, realizar maniobra F/M, sino respira pasamos a llamar al 112 y a practicar la RCP (son 30 compresiones de pecho y 2 ventilaciones (30:2); la ventilaciones son opcionables).



Procuraremos girar al paciente para evitar broncorespiración (tragarse el vómito). Esta maniobra sirve para aumentar el tiempo que puede soportar el cuerpo sin oxígeno. MANIOBRE F/M



Ahora, respecto a las heridas severas no debemos realizar nunca un torniquete (ya que para que funcion bien debe medir 10 cm de grosor (que no hay muchas cosas a mano con esa anchura) y puede provocar gangrena), salvo en casos extremos, lo que tenemos que hacer es presionar la herida con un vendaje compresivo para parar la circulación de la sangre. Seguidamente llamar al 112.

En caso de intoxicación, llamar al 112 y nunca provocar el vómito ya que podemos quemar el esófago.

Y finalmente, en caso de obstrucción de las vías aéreas dependerá del tipo que sea, incompleta o completa. En el caso de la segunda; que es la más grave; deberemos golpeat intraescapularmente 5 veces y si esto no resulta pasamos a comprimir el abdomen con la maniobra Heimlich.

ESTUDIO DE LA MENSTRUACIÓN EN LA SALIVA

OBJETIVO: Observación de la saliva para determinar el ciclo menstrual.

MATERIAL:
*Chicas (si puede ser guapas como en mi clase y con diferentes ciclos).
*Portaobjetos.
*Microscopio.

PROCEDIMIENTO: Es un experimento sencillo ya que solo debemos aplicar una muestra de saliva en un portaobjetos, esperar a que seque y observar a través del microscopio. Al mirar veromos unas ramificaciones que nos indicaran el estado del ciclo (a mayor cantidad de ramificaciones, más cerca estara de la ovulación). En la siguiente muestra observamos muchas ramificaciones, es decir, esta ovulando.



COCLUSIÓN : La práctica es sencilla, lo único que puede ocurrir es que algunas de las muestras no coincida con el ciclo de las chicas (o algo peor).

TEJIDO EPITELIAL CILIADO

OBJETIVO: Observacion del tejido epitelial de las branquias de un mejillón fresco.




MATERIAL:

*Mejillones frescos.
*Cuchilo o navaja.
*Cuentagotas.
*Portaobjetos y cubreobjeto.
*Pinzas.
*Mricoscopio.

PROCEDIMIENTO:

1. Abrimos el mejillon fresco con cuidado de no cortarnos, para elo nos valemos de la navaja (o bisturí en nuestro caso particular) que se introduce entre las dos valvas. Para separar las valvas no es necesario aplicar demasiada fuerza, sino presionar suave y continuamente hasta lograr la apetertura de las mismas.

2. Ahora, con el cuentagotas absorbemos el líquido interno del mejillón y depositamos una gota en el portaobjetos.

3. Con la ayuda de las pinzas, arrancamos un trozo de las branquiasy lo depositamos sobre el porta. A continuación, colocamos el cubre sobre la muestra y la llevamos al microscopio, empleando fuertes aumentos.

4. Al observar el tejido del mejillón, podemos llegar a observar movimientos rítmicos, si el mejilopn estaba vivo.

CONCLUSIÓN: Con esta práctica hemos conseguido aprender algo más a cerca de los pequeños bivalvos de nuestros mares y océanos.

PREPARACIÓN DE MUESTRAS HISTOLÓGICAS DE TEJIDOS ANIMALES

TEJIDO CONJUNTIVO: Este tejido se caracteriza por la abundante sustancia intercelular con fibras de colágeno, elásticas y reticulares elaboradas por los fibrocitos. Además de éstas, encontraremos macrófagos, linfocitos, entre otras células de otros tejidos.



MATERIAL: microscopio, porta, cubre, pocillo de tinción, pinzas de disección, aguja enmangada, frasco lavador, azul de metileno, alcohol etílico y un trozo de pollo.

PROCEDIMIENTO:Separamos con las pinzas la piel del trozo de pollo. Introducimos entre la piel y la telilla (que aparece al separar la piel) una esquina del porta para coger la muestra de telilla extendida con unas gotas de alcohol hasta que se evapore. Luego vertimos el azul de metileno hasta cubrir y esperamos un minuto. Lavamos la muestra para limpiar el exceso de colorante y le añadimos una gota de agua y colocamos el cubre. Finalmente observamos al microscopio.

TEJIDO CARTILAGINOSO: Es un tejido conectivo con función esqueléticacon sustancia intercelular. Las células de este tejido son los condrocitos que se encuentran en una laguna que llenan por completo. Cada laguna contiene varias células formando un grupo isógeno.



MATERIAL: Microscopio, porta, cubre, microtomo de mano, bisturí, frasco lavador, 3 vidrios de reloj, aguja enmangada, alcohol etílico de 96ºy giemsa (tinte).

PROCEDIMIENTO: En los 3 vidrios de reloj colocamos en el primero agua, en el segundo alcohol de 96º y en el tercero giemsa. A continuación, obtenemos una muestra del cartilago del pollo con el microtomo y el bisturí (una navaja histológica, si disponemos de ella, para realizar cortes más precisos) hacemos varios cortes y con la aguija enmangada los introducimos en el primer vidrio de reloj. Luego pasamos esos cortes del primero al segundo durante 5 ó 7 minutos.Después volvemos a pasar los cortes al primer vidrio de reloj para lavarlo y los movemos con la aguja enmangada de un lado a otro durante un minuto aproximadamente. Acto seguido cogemos los trozos y los metemos en la giemsa manteniendolo allí un minuto mas y posteriormente lo limipamos en el agua para eliminar el exceso de colorante, colocamos las muestras sobre el portaobjetos y añadimos una gota de agua y el cubreobjeto. Para finlaizar, observamos con el microscopio las muestras.

TEJIDO ADIPOSO: El tejido adiposo o tejido graso es el tejido de origen mesenquimal (un tipo de tejido conjuntivo) conformado por la asociación de células que acumulan lípido en su citoplasma: los adipocitos.

El tejido adiposo, por un lado cumple funciones mecánicas: una de ellas es servir como amortiguador, protegiendo y manteniendo en su lugar los órganos internos así como a otras estructuras más externas del cuerpo, y también tiene funciones metabólicas.



MATERIAL: bisturí, pinzas, cubre y porta objetos, papel de filtro, trozos de tocino, un fransco lavador y un posillo de tincion.

PROCEDIMIENTO: Con el trozo de tocino, las pinzas y el bisturí, cortamos trozos del tejido adiposo muy finos, que colocamos en un porta con gotas de formol durante cuatro minutos, tras los cuales, limipiamos el sobrante y rociamos con sustancia de suglan III, dejando actuar durante cinco minutos, para posteriormente lavar la muestra en el posillo de tinción, para eliminar el exceso de tinte. Finalizada dicha accion, colocamos el cubre y sometemos la mezcla a la técnica del squash, consistente en ejercer una leve presión con los dedos sobre el cubre para eliminar las burbujas y la muestra quede lo mas plana posible para así poderla observar en el microscopio.

OBSEVACIÓN E IDENTIFICACIÓN DE TEJIDOS ANIMALES

PRIMER TEJIDO:

1)Nombre: Tejido muscular.

2)Tipo:liso.

3)Función y Localización:se encarga de la contracción y relagación involuntaria de los diferntes órganos del cuerpo como el iris de los ojos y las paredes del intestino delgado estimulados por el sistema nervioso.

4)Componentes del tejido:tipos de células,matriz si a hay:Este tejido esta formado por libras musculares alargadas y no tiene matriz.



SEGUNDO TEJIDO:

1)Nombre:Tejido óseo

2)Tipo:compacto

3)Función y Localización: Se localiza en la parte externa de los huesos planos y en las cañas de los huesos largos y su función es esqueletica.

4)Componentes del tejido: Este tejido esta compuesto por los osteoblastos (renuevan el tejido y son responsables de la formación de tejido óseo nuevo), los osteocitos (que son los osteoblastos maduros y desarrollan una actividad menor) y los osteoclastos (que se encargan de reabsorber o eliminar la materia ósea). Contiene matriz.



TERCER TEJIDO:

1)Nombre: Tejido muscular

2)tipo: Estriado

3)Función y Localización: Se encarga de la relajación y contracción voluntaria de los musculos del cuerpo y se localiza en la mayor parte de los músculos de cuerpo que están unidos a zonas del esqueleto mediante inserciones de tejido conjuntivo llamadas tendones. Las contracciones del músculo esquelético permiten los movimientos de los distintos huesos y cartílagos del esqueleto.

4)Componentes del tejido: Las fibras son células fusiformes alargadas que contienen muchos núcleos y en las que se observa con claridad estrías longitudinales y transversales (en forma de banda).