miércoles, 25 de mayo de 2011
lunes, 10 de mayo de 2010
DISECCIÓN DE UN CORAZÓN Y DE UN RIÑON DE CERDO
Esta práctica es exactamente igual que la práctica de la disección del pulmón, lo único que la diferencia es el órgano de obsevación. A CAMBIO DE NO PONER NINGÚN TIPO DE GUIÓN EN ESTA PRÁCTICA DE ESTOS DOS ÓRGANOS, pondré muchas imagenes de ambas prácticas (perdoname Elena, pero con los examenes y que el objetivo, los materiales y el fundamento son el mismos que en la práctica del pulmón (^.^).)
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Y EL RIÑÓN:
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Y EL RIÑÓN:
UNA AMBULANCIA POR DENTRO ^.^
Una práctica apasionante y muy instructiva ya que es la primera vez que observo una ambulancia por dentro. En ella, tuvimos acceso a todo tipo de material de primeros auxilios (^.^).
miércoles, 14 de abril de 2010
EXPERIEMNTOS RESPECTO A LOS PULMONES: ESPIROMETRIA Y COMPONENTES DEL TABACO
OBJETIVO: Con la espirometria calculamos la capacidad de los pulmones de los compañeros de la clase y con el tabaco observamos los agentes causantes de la adicción y la necrosisi de los pulmones.
MATERIALES: Para la espirometria utilizaremos: una botella de agua de 5 L (la cual hemos nivelado a cada 200 ml), un tubo de goma, un cubo grande (el empleado por los obreros de una obra para mezclar cemento del Instituto I.E.S. Punta Larga, por ejemplo ^.^) y mucha agua en ambos recipientes. Para el experimento del tabaco emplearemos: una botella de 2 l (que estara llena hasta las 2/3 partes del contenido de la misma), un cigarrillo (LM light, para ser más exactos, en nuestro caso), una guata, cinta adesiva y una aguja enmangada (o un pincho u objeto punzantes).
ESPIROMETRIA: Esta práctica sirve para determinar la capacidad pulmonar de los participantes del experimento utilizando la botella con el tubo de goma dentro del cubo. Cada alumno realizó la siguiente práctica dando lugar a la siguiente tabla:
Ainhoa 0.4 – 1.8
Carlos 0.6 – 2.2
Jesi 0.5 - 1.3
Laura 0.5 – 1.1
Pablo 0.8 – 2.6
Cristina 0.6 – 1.8
Pilar 0.6 – 1.6
Derimán 0.6 – 2.1
Elena 0.6 – 1.6
Jazer 0.6 – 2.2
Se realizó una prueba de esfuerzo para comprobar la capacidad pulmonar de cada uno, subiendo y bajando escaleras.
COMPONENTES DEL TABACO: Con el tabaco, una botella(llena 2/3), un cigarrillo y un cubo para recoger el agua que saldrá de la botella por el agujero que hemos hecho con una aguja enmangada. Con la botella llena, el cigarrillo en la boquilla con algodón y cinta adesiva y encendido, dejaremos que salga el agua por el agujero para que se consuma el cigarrillo y luego comprobaremos el algodón.
CONCLUSIÓN: Práctica divertida y curiosa ^.^
MATERIALES: Para la espirometria utilizaremos: una botella de agua de 5 L (la cual hemos nivelado a cada 200 ml), un tubo de goma, un cubo grande (el empleado por los obreros de una obra para mezclar cemento del Instituto I.E.S. Punta Larga, por ejemplo ^.^) y mucha agua en ambos recipientes. Para el experimento del tabaco emplearemos: una botella de 2 l (que estara llena hasta las 2/3 partes del contenido de la misma), un cigarrillo (LM light, para ser más exactos, en nuestro caso), una guata, cinta adesiva y una aguja enmangada (o un pincho u objeto punzantes).
ESPIROMETRIA: Esta práctica sirve para determinar la capacidad pulmonar de los participantes del experimento utilizando la botella con el tubo de goma dentro del cubo. Cada alumno realizó la siguiente práctica dando lugar a la siguiente tabla:
Ainhoa 0.4 – 1.8
Carlos 0.6 – 2.2
Jesi 0.5 - 1.3
Laura 0.5 – 1.1
Pablo 0.8 – 2.6
Cristina 0.6 – 1.8
Pilar 0.6 – 1.6
Derimán 0.6 – 2.1
Elena 0.6 – 1.6
Jazer 0.6 – 2.2
Se realizó una prueba de esfuerzo para comprobar la capacidad pulmonar de cada uno, subiendo y bajando escaleras.
COMPONENTES DEL TABACO: Con el tabaco, una botella(llena 2/3), un cigarrillo y un cubo para recoger el agua que saldrá de la botella por el agujero que hemos hecho con una aguja enmangada. Con la botella llena, el cigarrillo en la boquilla con algodón y cinta adesiva y encendido, dejaremos que salga el agua por el agujero para que se consuma el cigarrillo y luego comprobaremos el algodón.
CONCLUSIÓN: Práctica divertida y curiosa ^.^
miércoles, 24 de marzo de 2010
DISECCIÓN DE UN PULMÓN
OBJETIVO: Observación de un pulmón de cerdo para determinar sus partes y, además, realizaremos inspiraciones y espiraciones para el estudio de su funcionamiento.
MATERIALES:
*Cubeta de disección, tijeras, bisturí, pinzas, balanza, tubo de goma, guantes (opcionales) y pulmón de cerdo (si puede ser con laringe y tráquea).
PROCEDIMIENTO:Los pulmones sonúsculos encargados de la respiracion del organismo y se encuentran dentro de la caja torácica rodeados por las costillas y sostenidos por los músculos intercostales y el diafragma(que separa los pulmones del resto del cuerpo y es el encargado de los movimientos de inspiración y expiración). Cada pulmón consta de número determinado de lóbulos (divisiones propias de los pulmones y, por ejemplo, el hígado); en el cuerpo humano; el derecho tiene 3 y el izquuierdo tiene 2 (por su posición cercana al corazón este último). el el siguiente esquema podemos observar las partes por las que estan constituidos los pulmones:
Sabiendo esto, pasamos a la disección propiamente dicha. Con los pulmones de un cerdo pasamos a la observación del mismo en la cubeta de disección y realizamos expiraciones e inspiraciones para comprobar el funcionamiento de este órgano con el tubo de goma.
Luego pasamos a pesarlo en la balanza (1,5 Kg (lo normal de este órgano)) y con el bisturí examinamos sus partes, ayudandonos de las pinzas.
CONCLUSIÓN: Práctica muy ejemplificadora a la vez que divertida (aún sin a ver intervenido tanto com o yo hubiese querido ^.^)
MATERIALES:
*Cubeta de disección, tijeras, bisturí, pinzas, balanza, tubo de goma, guantes (opcionales) y pulmón de cerdo (si puede ser con laringe y tráquea).
PROCEDIMIENTO:Los pulmones sonúsculos encargados de la respiracion del organismo y se encuentran dentro de la caja torácica rodeados por las costillas y sostenidos por los músculos intercostales y el diafragma(que separa los pulmones del resto del cuerpo y es el encargado de los movimientos de inspiración y expiración). Cada pulmón consta de número determinado de lóbulos (divisiones propias de los pulmones y, por ejemplo, el hígado); en el cuerpo humano; el derecho tiene 3 y el izquuierdo tiene 2 (por su posición cercana al corazón este último). el el siguiente esquema podemos observar las partes por las que estan constituidos los pulmones:
Sabiendo esto, pasamos a la disección propiamente dicha. Con los pulmones de un cerdo pasamos a la observación del mismo en la cubeta de disección y realizamos expiraciones e inspiraciones para comprobar el funcionamiento de este órgano con el tubo de goma.
Luego pasamos a pesarlo en la balanza (1,5 Kg (lo normal de este órgano)) y con el bisturí examinamos sus partes, ayudandonos de las pinzas.
CONCLUSIÓN: Práctica muy ejemplificadora a la vez que divertida (aún sin a ver intervenido tanto com o yo hubiese querido ^.^)
miércoles, 17 de marzo de 2010
OBSERVACIÓN DEL HÍGADO
OBSERVACIÓN: Disección de un hígado de cerdo, traído por Sara, ya que es muy similar en tamaño, aspecto y funciones al de los seres humanos.
MATERIALES:
*Cubeta para disecciones, papel de filtro, bisturí, microscopio, pinzas, cubre y portaobjetos.
PROCEDIMIENTO:
Colocamos el hígado en la cubeta para su observación (lo que viene siendo "echar un vistazo") y pasamos a identificar las partes del hígado llamados lóbulos. Para concluir, extraemos con las pinzas las células del hígado (hepatocitos) para observarlas al microscopio.
CONCLUSIÓN: Hubiese sido más divertido hacer algo más con el hígado (a parte de pesarlo y "mirarlo" claro ¬¬), pero muy bien ^^.
MATERIALES:
*Cubeta para disecciones, papel de filtro, bisturí, microscopio, pinzas, cubre y portaobjetos.
PROCEDIMIENTO:
Colocamos el hígado en la cubeta para su observación (lo que viene siendo "echar un vistazo") y pasamos a identificar las partes del hígado llamados lóbulos. Para concluir, extraemos con las pinzas las células del hígado (hepatocitos) para observarlas al microscopio.
CONCLUSIÓN: Hubiese sido más divertido hacer algo más con el hígado (a parte de pesarlo y "mirarlo" claro ¬¬), pero muy bien ^^.
DETERMINACIÓN DE AZÚCARES REDUCTORES Y ALMIDÓN EN LOS ALIMENTOS
OBJETIVO: Con diferentes productos pasaremos a detectar la presencia de azúcares en los alimentos.
MATERIALES: LUUGOL (COMO NO ¬¬), uvas, naranja, limón, mortero, pipetas y embolo, agua,tubos de ensayo para las muestras, vaso de precipitado, mecheroy bombona, termómetro, plátano, jamón, arroz, papas y el reactivo de Fehling para comprobar la existencia de azúcares reductores (todos los disacáridos y monosacáridos menos la fructosa).
PROCEDIMIENTO:
Machacamos los alimentos en el mortero (nos podemos ayudar con un poco de agua), cogemos 2 ml y los introducimos en diferentes tubos de ensayo (en cada tubo 2 ml de cada alimento por separado). Luego, introduccimos 2 ml de Fehling en cada tubo y lo calentamos en un vaso de precipitado con agua caliente y controlandola con un termómetro más el lugol para determinar que tipo de azúcares presentan.
Descubrimos que el plátano tiene almidón en abundancia ¡y también el jamón aunque no debería tenerlo! Al parecer a los embutidos de baja calidad le añaden papa para disminuir la cantidad de carne.
También vimos que, como aseguran los textos de biología, la uva contiene glucosa y que el plátano también posee al menos un azúcar reductor (probablemente fructosa). El resto de las frutas no contienen almidón y el arroz presenta un alto contenido de esta molécula, pero nada de azúcares reductores.
CONCLUSIÓN: No hay que comprar jamón cocido de baja calidad por la poco cantidad de carne y la enorme cantidad de azúcares que posee.
MATERIALES: LUUGOL (COMO NO ¬¬), uvas, naranja, limón, mortero, pipetas y embolo, agua,tubos de ensayo para las muestras, vaso de precipitado, mecheroy bombona, termómetro, plátano, jamón, arroz, papas y el reactivo de Fehling para comprobar la existencia de azúcares reductores (todos los disacáridos y monosacáridos menos la fructosa).
PROCEDIMIENTO:
Machacamos los alimentos en el mortero (nos podemos ayudar con un poco de agua), cogemos 2 ml y los introducimos en diferentes tubos de ensayo (en cada tubo 2 ml de cada alimento por separado). Luego, introduccimos 2 ml de Fehling en cada tubo y lo calentamos en un vaso de precipitado con agua caliente y controlandola con un termómetro más el lugol para determinar que tipo de azúcares presentan.
Descubrimos que el plátano tiene almidón en abundancia ¡y también el jamón aunque no debería tenerlo! Al parecer a los embutidos de baja calidad le añaden papa para disminuir la cantidad de carne.
También vimos que, como aseguran los textos de biología, la uva contiene glucosa y que el plátano también posee al menos un azúcar reductor (probablemente fructosa). El resto de las frutas no contienen almidón y el arroz presenta un alto contenido de esta molécula, pero nada de azúcares reductores.
CONCLUSIÓN: No hay que comprar jamón cocido de baja calidad por la poco cantidad de carne y la enorme cantidad de azúcares que posee.
martes, 16 de marzo de 2010
AMILASA EN LA SALIVA
OBJETIVO: Demostración de la existencia de la enzima amilasa (ptialina) en la saliva, la cual se encarga de la ruptura de polisacáridos en estructuras más pequeñas.
MATERIALES:
*Tubos de ensayo,vaso de precipitado, saliva (como no), lugol, agua destilada, mechero, termómetro y almidón.
PROCEDIMIENTO:
Cogemos 2 ml de saliva y los colocamos en un tubo de ensayo y ponemos dos en ese tubo una disolución de agua más almidón. Después, para acelerar la reacción del almidón con la saliva, ponemos el tubo de ensayo en un vaso de precipitado con agua caliente al baño maria y controlamos la temperatura del agua con un termómetro para que la amilasa no cese su actividad. Finalmente, teniendo presente que el lugol con el almidón cambia de color (marrón), echamos gotas en el tubo de ensayo y observamos el cambio de color de la muestra.
CONCLUSIÓN: Muuy chulo (es que Elena no se me ocurria nada para la conclusión ^^)
MATERIALES:
*Tubos de ensayo,vaso de precipitado, saliva (como no), lugol, agua destilada, mechero, termómetro y almidón.
PROCEDIMIENTO:
Cogemos 2 ml de saliva y los colocamos en un tubo de ensayo y ponemos dos en ese tubo una disolución de agua más almidón. Después, para acelerar la reacción del almidón con la saliva, ponemos el tubo de ensayo en un vaso de precipitado con agua caliente al baño maria y controlamos la temperatura del agua con un termómetro para que la amilasa no cese su actividad. Finalmente, teniendo presente que el lugol con el almidón cambia de color (marrón), echamos gotas en el tubo de ensayo y observamos el cambio de color de la muestra.
CONCLUSIÓN: Muuy chulo (es que Elena no se me ocurria nada para la conclusión ^^)
EN BUSCA DE LA VITAMINA C
OBJETIVO: Determinar la cantidad de vitamina C (ácido l-ascórbico) que actua como cofactor, antioxidante y se oxida con luz y con oxígeno. Además, emplearemos el almidón como punto de referencia (que con una gota de almidón ya cambia de color de blanco a marrón) y compararlo con los demás.
MATERIALES:
*Naranja, limón, mandarina, naranja (que lleva 2 semanas en la nevera), mirinda, redoxón, minute maid, vaso precipitado, embudo, tubos de ensayo, papel de filtro, pipeta, embolo, lugol y agua destilada. Si no disponemos de almidón podemos emplear ión yodo (I) como indicador ya que al oxidarse se volvera de color violeta.
PROCEDIMIENTO:
Primero, mezclamos agua destilada (150 ml) con almidón ("a ojo")y lo con los tubos de ensayo vamos colocando 2 ml de la disolución anterior, 2ml de jugo, 2ml de mirinda, 2 ml de naranja, 2 ml de redoxón y 2 ml de limón. Después, añadimos 2 ml de almidón en todos los tubos (menos en el que ya habia almidón) y vamos echando gota a gota en cada tubo de ensayo el lugol y calentamos en un vaso de precipitado con agua para acelerar la reacción y tenemos en cuenta que en la disolución de almidón más agua se necesita 1 gota para el cambio de color. Finalmente, en el tubo de ensayo con el jugo 1 gota, en la mirinda 1 gota, en la naranja 1 gota (que al cortarla se oxido muy pronto), en el redoxón 25 gotas de lugol y en el limón 2 gotas.
CONCLUSIÓN: 2 empedimientos: que debimos poner 2 ml más en la disolución de agua más almidón y que debíamos haber cortado la naranja más tarde.
MATERIALES:
*Naranja, limón, mandarina, naranja (que lleva 2 semanas en la nevera), mirinda, redoxón, minute maid, vaso precipitado, embudo, tubos de ensayo, papel de filtro, pipeta, embolo, lugol y agua destilada. Si no disponemos de almidón podemos emplear ión yodo (I) como indicador ya que al oxidarse se volvera de color violeta.
PROCEDIMIENTO:
Primero, mezclamos agua destilada (150 ml) con almidón ("a ojo")y lo con los tubos de ensayo vamos colocando 2 ml de la disolución anterior, 2ml de jugo, 2ml de mirinda, 2 ml de naranja, 2 ml de redoxón y 2 ml de limón. Después, añadimos 2 ml de almidón en todos los tubos (menos en el que ya habia almidón) y vamos echando gota a gota en cada tubo de ensayo el lugol y calentamos en un vaso de precipitado con agua para acelerar la reacción y tenemos en cuenta que en la disolución de almidón más agua se necesita 1 gota para el cambio de color. Finalmente, en el tubo de ensayo con el jugo 1 gota, en la mirinda 1 gota, en la naranja 1 gota (que al cortarla se oxido muy pronto), en el redoxón 25 gotas de lugol y en el limón 2 gotas.
CONCLUSIÓN: 2 empedimientos: que debimos poner 2 ml más en la disolución de agua más almidón y que debíamos haber cortado la naranja más tarde.
martes, 2 de febrero de 2010
LA SANGRE
OBJETIVO: Determinar el grupo sanguíneo y observar al microscopio un frotis de la sangre.
GRUPO SANGUÍNEO:
MATERIAL:
*Portaobjetos.
*Lancetas estériles y palillos.
*Sueros sanguíneos anti A, anti B y anti Rh (con estos sueros determinaremos el grupo).
*Algodón.
*Alcohol.
PROCEDIMIENTO:
Primero, debemos obtener una muestra de sangre, para ello nos hacemos una punción en la yema del dedo con una de las lancetas, lo apretamos para que gotee y colocamos 3 gotas separadas en el portaobjetos. Después, colocamos sobre la gota de la izquierda una gota de suero anti A, en la del centro el suero anti B y en el de la derecha el suero anti Rh. A continuación, mezclamos bien las gotas con los palillos. Según se produzca aglutinación en una u otra gota, tendremos sangre del tipo A, B, AB, 0, Rh+ o Rh-.
ESTUDIO DE UN FROTIS:
Lo primero es saber como hacer un frotis, para ello cogemos una gota de sangre en el centro de un porta, inmediatamente con otro porta extendemos la muestra usando el borde del otro, procurando extenderla uniformemente. Dejamos secar la muestra al aire y la teñimos con varias gotas de Wright durante 2 minutos. Luego, añadimos el igual número de gotas de agua destilada y la mantenemos así 3 minutos; la lavamos con más agua destilada, añadiendo gota a gota, durante 30 segundos; luego dejamos secar.
Con el frotis ya hecho, pasamos al microscopio a observar los glóbulos rojos(también llamados Hematies con forma aplanada, sin núcleo y con la función de transportar el oxígeno).
Después los glóbulos blancos (algunos mucho más grandes que los hematies y que se dividen en dos grupos : SERIE GRANULOCÍTICA Y SERIE AGRANULOCÍTICA (con granulos o sin granulos, respectivamente).
Si encontramos muchos de estos linfocitos puede deberse a algún tipo de alergia o, encasos graves, leucemia.
GRUPO SANGUÍNEO:
MATERIAL:
*Portaobjetos.
*Lancetas estériles y palillos.
*Sueros sanguíneos anti A, anti B y anti Rh (con estos sueros determinaremos el grupo).
*Algodón.
*Alcohol.
PROCEDIMIENTO:
Primero, debemos obtener una muestra de sangre, para ello nos hacemos una punción en la yema del dedo con una de las lancetas, lo apretamos para que gotee y colocamos 3 gotas separadas en el portaobjetos. Después, colocamos sobre la gota de la izquierda una gota de suero anti A, en la del centro el suero anti B y en el de la derecha el suero anti Rh. A continuación, mezclamos bien las gotas con los palillos. Según se produzca aglutinación en una u otra gota, tendremos sangre del tipo A, B, AB, 0, Rh+ o Rh-.
ESTUDIO DE UN FROTIS:
Lo primero es saber como hacer un frotis, para ello cogemos una gota de sangre en el centro de un porta, inmediatamente con otro porta extendemos la muestra usando el borde del otro, procurando extenderla uniformemente. Dejamos secar la muestra al aire y la teñimos con varias gotas de Wright durante 2 minutos. Luego, añadimos el igual número de gotas de agua destilada y la mantenemos así 3 minutos; la lavamos con más agua destilada, añadiendo gota a gota, durante 30 segundos; luego dejamos secar.
Con el frotis ya hecho, pasamos al microscopio a observar los glóbulos rojos(también llamados Hematies con forma aplanada, sin núcleo y con la función de transportar el oxígeno).
Después los glóbulos blancos (algunos mucho más grandes que los hematies y que se dividen en dos grupos : SERIE GRANULOCÍTICA Y SERIE AGRANULOCÍTICA (con granulos o sin granulos, respectivamente).
Si encontramos muchos de estos linfocitos puede deberse a algún tipo de alergia o, encasos graves, leucemia.
domingo, 31 de enero de 2010
PRIMEROS AUXILIOS
OBJETIVO: Aprender como debemos actuar y que debemos hacer en el caso que necesitemos emplear primeros auxilios.
¿Cómo hay que actuar antes de aplicar los primeros auxilios?:
-Ante todo hay que seguir una regla nemotécnica llamada P.A.S. (proteger, alertar y socorrer). Lo primero es evaluar al accidentado (sin que comprometa a nadie, incluyendo al paciente y a nosotros mismos) comprobando la conciencia y la respiración durante 10 segundos con la maniobra frente-mentón (F/M) que consiste en elevar el mentón y comprobar la respiracíón acercando la cara a la naríz del paciente para sentir, ver y oir la respiración.
Luego, observamos si tiene hemorragias severas, para taponarlas, y en caso de parada cardiorespiratoria (PCR). Esta maniobra la debemos aplicar suguiendo unas pautas: proteger, comprobar conciencia, realizar maniobra F/M, sino respira pasamos a llamar al 112 y a practicar la RCP (son 30 compresiones de pecho y 2 ventilaciones (30:2); la ventilaciones son opcionables).
Procuraremos girar al paciente para evitar broncorespiración (tragarse el vómito). Esta maniobra sirve para aumentar el tiempo que puede soportar el cuerpo sin oxígeno. MANIOBRE F/M
Ahora, respecto a las heridas severas no debemos realizar nunca un torniquete (ya que para que funcion bien debe medir 10 cm de grosor (que no hay muchas cosas a mano con esa anchura) y puede provocar gangrena), salvo en casos extremos, lo que tenemos que hacer es presionar la herida con un vendaje compresivo para parar la circulación de la sangre. Seguidamente llamar al 112.
En caso de intoxicación, llamar al 112 y nunca provocar el vómito ya que podemos quemar el esófago.
Y finalmente, en caso de obstrucción de las vías aéreas dependerá del tipo que sea, incompleta o completa. En el caso de la segunda; que es la más grave; deberemos golpeat intraescapularmente 5 veces y si esto no resulta pasamos a comprimir el abdomen con la maniobra Heimlich.
¿Cómo hay que actuar antes de aplicar los primeros auxilios?:
-Ante todo hay que seguir una regla nemotécnica llamada P.A.S. (proteger, alertar y socorrer). Lo primero es evaluar al accidentado (sin que comprometa a nadie, incluyendo al paciente y a nosotros mismos) comprobando la conciencia y la respiración durante 10 segundos con la maniobra frente-mentón (F/M) que consiste en elevar el mentón y comprobar la respiracíón acercando la cara a la naríz del paciente para sentir, ver y oir la respiración.
Luego, observamos si tiene hemorragias severas, para taponarlas, y en caso de parada cardiorespiratoria (PCR). Esta maniobra la debemos aplicar suguiendo unas pautas: proteger, comprobar conciencia, realizar maniobra F/M, sino respira pasamos a llamar al 112 y a practicar la RCP (son 30 compresiones de pecho y 2 ventilaciones (30:2); la ventilaciones son opcionables).
Procuraremos girar al paciente para evitar broncorespiración (tragarse el vómito). Esta maniobra sirve para aumentar el tiempo que puede soportar el cuerpo sin oxígeno. MANIOBRE F/M
Ahora, respecto a las heridas severas no debemos realizar nunca un torniquete (ya que para que funcion bien debe medir 10 cm de grosor (que no hay muchas cosas a mano con esa anchura) y puede provocar gangrena), salvo en casos extremos, lo que tenemos que hacer es presionar la herida con un vendaje compresivo para parar la circulación de la sangre. Seguidamente llamar al 112.
En caso de intoxicación, llamar al 112 y nunca provocar el vómito ya que podemos quemar el esófago.
Y finalmente, en caso de obstrucción de las vías aéreas dependerá del tipo que sea, incompleta o completa. En el caso de la segunda; que es la más grave; deberemos golpeat intraescapularmente 5 veces y si esto no resulta pasamos a comprimir el abdomen con la maniobra Heimlich.
viernes, 29 de enero de 2010
ESTUDIO DE LA MENSTRUACIÓN EN LA SALIVA
OBJETIVO: Observación de la saliva para determinar el ciclo menstrual.
MATERIAL:
*Chicas (si puede ser guapas como en mi clase y con diferentes ciclos).
*Portaobjetos.
*Microscopio.
PROCEDIMIENTO: Es un experimento sencillo ya que solo debemos aplicar una muestra de saliva en un portaobjetos, esperar a que seque y observar a través del microscopio. Al mirar veromos unas ramificaciones que nos indicaran el estado del ciclo (a mayor cantidad de ramificaciones, más cerca estara de la ovulación). En la siguiente muestra observamos muchas ramificaciones, es decir, esta ovulando.
COCLUSIÓN : La práctica es sencilla, lo único que puede ocurrir es que algunas de las muestras no coincida con el ciclo de las chicas (o algo peor).
MATERIAL:
*Chicas (si puede ser guapas como en mi clase y con diferentes ciclos).
*Portaobjetos.
*Microscopio.
PROCEDIMIENTO: Es un experimento sencillo ya que solo debemos aplicar una muestra de saliva en un portaobjetos, esperar a que seque y observar a través del microscopio. Al mirar veromos unas ramificaciones que nos indicaran el estado del ciclo (a mayor cantidad de ramificaciones, más cerca estara de la ovulación). En la siguiente muestra observamos muchas ramificaciones, es decir, esta ovulando.
COCLUSIÓN : La práctica es sencilla, lo único que puede ocurrir es que algunas de las muestras no coincida con el ciclo de las chicas (o algo peor).
miércoles, 27 de enero de 2010
TEJIDO EPITELIAL CILIADO
OBJETIVO: Observacion del tejido epitelial de las branquias de un mejillón fresco.
MATERIAL:
*Mejillones frescos.
*Cuchilo o navaja.
*Cuentagotas.
*Portaobjetos y cubreobjeto.
*Pinzas.
*Mricoscopio.
PROCEDIMIENTO:
1. Abrimos el mejillon fresco con cuidado de no cortarnos, para elo nos valemos de la navaja (o bisturí en nuestro caso particular) que se introduce entre las dos valvas. Para separar las valvas no es necesario aplicar demasiada fuerza, sino presionar suave y continuamente hasta lograr la apetertura de las mismas.
2. Ahora, con el cuentagotas absorbemos el líquido interno del mejillón y depositamos una gota en el portaobjetos.
3. Con la ayuda de las pinzas, arrancamos un trozo de las branquiasy lo depositamos sobre el porta. A continuación, colocamos el cubre sobre la muestra y la llevamos al microscopio, empleando fuertes aumentos.
4. Al observar el tejido del mejillón, podemos llegar a observar movimientos rítmicos, si el mejilopn estaba vivo.
CONCLUSIÓN: Con esta práctica hemos conseguido aprender algo más a cerca de los pequeños bivalvos de nuestros mares y océanos.
MATERIAL:
*Mejillones frescos.
*Cuchilo o navaja.
*Cuentagotas.
*Portaobjetos y cubreobjeto.
*Pinzas.
*Mricoscopio.
PROCEDIMIENTO:
1. Abrimos el mejillon fresco con cuidado de no cortarnos, para elo nos valemos de la navaja (o bisturí en nuestro caso particular) que se introduce entre las dos valvas. Para separar las valvas no es necesario aplicar demasiada fuerza, sino presionar suave y continuamente hasta lograr la apetertura de las mismas.
2. Ahora, con el cuentagotas absorbemos el líquido interno del mejillón y depositamos una gota en el portaobjetos.
3. Con la ayuda de las pinzas, arrancamos un trozo de las branquiasy lo depositamos sobre el porta. A continuación, colocamos el cubre sobre la muestra y la llevamos al microscopio, empleando fuertes aumentos.
4. Al observar el tejido del mejillón, podemos llegar a observar movimientos rítmicos, si el mejilopn estaba vivo.
CONCLUSIÓN: Con esta práctica hemos conseguido aprender algo más a cerca de los pequeños bivalvos de nuestros mares y océanos.
miércoles, 2 de diciembre de 2009
PREPARACIÓN DE MUESTRAS HISTOLÓGICAS DE TEJIDOS ANIMALES
TEJIDO CONJUNTIVO: Este tejido se caracteriza por la abundante sustancia intercelular con fibras de colágeno, elásticas y reticulares elaboradas por los fibrocitos. Además de éstas, encontraremos macrófagos, linfocitos, entre otras células de otros tejidos.
MATERIAL: microscopio, porta, cubre, pocillo de tinción, pinzas de disección, aguja enmangada, frasco lavador, azul de metileno, alcohol etílico y un trozo de pollo.
PROCEDIMIENTO:Separamos con las pinzas la piel del trozo de pollo. Introducimos entre la piel y la telilla (que aparece al separar la piel) una esquina del porta para coger la muestra de telilla extendida con unas gotas de alcohol hasta que se evapore. Luego vertimos el azul de metileno hasta cubrir y esperamos un minuto. Lavamos la muestra para limpiar el exceso de colorante y le añadimos una gota de agua y colocamos el cubre. Finalmente observamos al microscopio.
TEJIDO CARTILAGINOSO: Es un tejido conectivo con función esqueléticacon sustancia intercelular. Las células de este tejido son los condrocitos que se encuentran en una laguna que llenan por completo. Cada laguna contiene varias células formando un grupo isógeno.
MATERIAL: Microscopio, porta, cubre, microtomo de mano, bisturí, frasco lavador, 3 vidrios de reloj, aguja enmangada, alcohol etílico de 96ºy giemsa (tinte).
PROCEDIMIENTO: En los 3 vidrios de reloj colocamos en el primero agua, en el segundo alcohol de 96º y en el tercero giemsa. A continuación, obtenemos una muestra del cartilago del pollo con el microtomo y el bisturí (una navaja histológica, si disponemos de ella, para realizar cortes más precisos) hacemos varios cortes y con la aguija enmangada los introducimos en el primer vidrio de reloj. Luego pasamos esos cortes del primero al segundo durante 5 ó 7 minutos.Después volvemos a pasar los cortes al primer vidrio de reloj para lavarlo y los movemos con la aguja enmangada de un lado a otro durante un minuto aproximadamente. Acto seguido cogemos los trozos y los metemos en la giemsa manteniendolo allí un minuto mas y posteriormente lo limipamos en el agua para eliminar el exceso de colorante, colocamos las muestras sobre el portaobjetos y añadimos una gota de agua y el cubreobjeto. Para finlaizar, observamos con el microscopio las muestras.
TEJIDO ADIPOSO: El tejido adiposo o tejido graso es el tejido de origen mesenquimal (un tipo de tejido conjuntivo) conformado por la asociación de células que acumulan lípido en su citoplasma: los adipocitos.
El tejido adiposo, por un lado cumple funciones mecánicas: una de ellas es servir como amortiguador, protegiendo y manteniendo en su lugar los órganos internos así como a otras estructuras más externas del cuerpo, y también tiene funciones metabólicas.
MATERIAL: bisturí, pinzas, cubre y porta objetos, papel de filtro, trozos de tocino, un fransco lavador y un posillo de tincion.
PROCEDIMIENTO: Con el trozo de tocino, las pinzas y el bisturí, cortamos trozos del tejido adiposo muy finos, que colocamos en un porta con gotas de formol durante cuatro minutos, tras los cuales, limipiamos el sobrante y rociamos con sustancia de suglan III, dejando actuar durante cinco minutos, para posteriormente lavar la muestra en el posillo de tinción, para eliminar el exceso de tinte. Finalizada dicha accion, colocamos el cubre y sometemos la mezcla a la técnica del squash, consistente en ejercer una leve presión con los dedos sobre el cubre para eliminar las burbujas y la muestra quede lo mas plana posible para así poderla observar en el microscopio.
MATERIAL: microscopio, porta, cubre, pocillo de tinción, pinzas de disección, aguja enmangada, frasco lavador, azul de metileno, alcohol etílico y un trozo de pollo.
PROCEDIMIENTO:Separamos con las pinzas la piel del trozo de pollo. Introducimos entre la piel y la telilla (que aparece al separar la piel) una esquina del porta para coger la muestra de telilla extendida con unas gotas de alcohol hasta que se evapore. Luego vertimos el azul de metileno hasta cubrir y esperamos un minuto. Lavamos la muestra para limpiar el exceso de colorante y le añadimos una gota de agua y colocamos el cubre. Finalmente observamos al microscopio.
TEJIDO CARTILAGINOSO: Es un tejido conectivo con función esqueléticacon sustancia intercelular. Las células de este tejido son los condrocitos que se encuentran en una laguna que llenan por completo. Cada laguna contiene varias células formando un grupo isógeno.
MATERIAL: Microscopio, porta, cubre, microtomo de mano, bisturí, frasco lavador, 3 vidrios de reloj, aguja enmangada, alcohol etílico de 96ºy giemsa (tinte).
PROCEDIMIENTO: En los 3 vidrios de reloj colocamos en el primero agua, en el segundo alcohol de 96º y en el tercero giemsa. A continuación, obtenemos una muestra del cartilago del pollo con el microtomo y el bisturí (una navaja histológica, si disponemos de ella, para realizar cortes más precisos) hacemos varios cortes y con la aguija enmangada los introducimos en el primer vidrio de reloj. Luego pasamos esos cortes del primero al segundo durante 5 ó 7 minutos.Después volvemos a pasar los cortes al primer vidrio de reloj para lavarlo y los movemos con la aguja enmangada de un lado a otro durante un minuto aproximadamente. Acto seguido cogemos los trozos y los metemos en la giemsa manteniendolo allí un minuto mas y posteriormente lo limipamos en el agua para eliminar el exceso de colorante, colocamos las muestras sobre el portaobjetos y añadimos una gota de agua y el cubreobjeto. Para finlaizar, observamos con el microscopio las muestras.
TEJIDO ADIPOSO: El tejido adiposo o tejido graso es el tejido de origen mesenquimal (un tipo de tejido conjuntivo) conformado por la asociación de células que acumulan lípido en su citoplasma: los adipocitos.
El tejido adiposo, por un lado cumple funciones mecánicas: una de ellas es servir como amortiguador, protegiendo y manteniendo en su lugar los órganos internos así como a otras estructuras más externas del cuerpo, y también tiene funciones metabólicas.
MATERIAL: bisturí, pinzas, cubre y porta objetos, papel de filtro, trozos de tocino, un fransco lavador y un posillo de tincion.
PROCEDIMIENTO: Con el trozo de tocino, las pinzas y el bisturí, cortamos trozos del tejido adiposo muy finos, que colocamos en un porta con gotas de formol durante cuatro minutos, tras los cuales, limipiamos el sobrante y rociamos con sustancia de suglan III, dejando actuar durante cinco minutos, para posteriormente lavar la muestra en el posillo de tinción, para eliminar el exceso de tinte. Finalizada dicha accion, colocamos el cubre y sometemos la mezcla a la técnica del squash, consistente en ejercer una leve presión con los dedos sobre el cubre para eliminar las burbujas y la muestra quede lo mas plana posible para así poderla observar en el microscopio.
OBSEVACIÓN E IDENTIFICACIÓN DE TEJIDOS ANIMALES
PRIMER TEJIDO:
1)Nombre: Tejido muscular.
2)Tipo:liso.
3)Función y Localización:se encarga de la contracción y relagación involuntaria de los diferntes órganos del cuerpo como el iris de los ojos y las paredes del intestino delgado estimulados por el sistema nervioso.
4)Componentes del tejido:tipos de células,matriz si a hay:Este tejido esta formado por libras musculares alargadas y no tiene matriz.
SEGUNDO TEJIDO:
1)Nombre:Tejido óseo
2)Tipo:compacto
3)Función y Localización: Se localiza en la parte externa de los huesos planos y en las cañas de los huesos largos y su función es esqueletica.
4)Componentes del tejido: Este tejido esta compuesto por los osteoblastos (renuevan el tejido y son responsables de la formación de tejido óseo nuevo), los osteocitos (que son los osteoblastos maduros y desarrollan una actividad menor) y los osteoclastos (que se encargan de reabsorber o eliminar la materia ósea). Contiene matriz.
TERCER TEJIDO:
1)Nombre: Tejido muscular
2)tipo: Estriado
3)Función y Localización: Se encarga de la relajación y contracción voluntaria de los musculos del cuerpo y se localiza en la mayor parte de los músculos de cuerpo que están unidos a zonas del esqueleto mediante inserciones de tejido conjuntivo llamadas tendones. Las contracciones del músculo esquelético permiten los movimientos de los distintos huesos y cartílagos del esqueleto.
4)Componentes del tejido: Las fibras son células fusiformes alargadas que contienen muchos núcleos y en las que se observa con claridad estrías longitudinales y transversales (en forma de banda).
1)Nombre: Tejido muscular.
2)Tipo:liso.
3)Función y Localización:se encarga de la contracción y relagación involuntaria de los diferntes órganos del cuerpo como el iris de los ojos y las paredes del intestino delgado estimulados por el sistema nervioso.
4)Componentes del tejido:tipos de células,matriz si a hay:Este tejido esta formado por libras musculares alargadas y no tiene matriz.
SEGUNDO TEJIDO:
1)Nombre:Tejido óseo
2)Tipo:compacto
3)Función y Localización: Se localiza en la parte externa de los huesos planos y en las cañas de los huesos largos y su función es esqueletica.
4)Componentes del tejido: Este tejido esta compuesto por los osteoblastos (renuevan el tejido y son responsables de la formación de tejido óseo nuevo), los osteocitos (que son los osteoblastos maduros y desarrollan una actividad menor) y los osteoclastos (que se encargan de reabsorber o eliminar la materia ósea). Contiene matriz.
TERCER TEJIDO:
1)Nombre: Tejido muscular
2)tipo: Estriado
3)Función y Localización: Se encarga de la relajación y contracción voluntaria de los musculos del cuerpo y se localiza en la mayor parte de los músculos de cuerpo que están unidos a zonas del esqueleto mediante inserciones de tejido conjuntivo llamadas tendones. Las contracciones del músculo esquelético permiten los movimientos de los distintos huesos y cartílagos del esqueleto.
4)Componentes del tejido: Las fibras son células fusiformes alargadas que contienen muchos núcleos y en las que se observa con claridad estrías longitudinales y transversales (en forma de banda).
viernes, 20 de noviembre de 2009
domingo, 15 de noviembre de 2009
CULTIVO BACTERIANO
OBJETIVO: Observación de las células de diferentes zonas del instituto (como el grifo o los pomos de las puertas) y las células de la garganta en un cultivo agar agar.
MATERIAL:
-Balanza.
-Mechero de alcohol.
-Probeta.
-Lupa binocular.
-Matraz.
-Agitador.
-Papel de filtro.
-Tubo de ensayo.
-Placa de pétri.
-Vaso de precipitados.
-Bastoncillo.
-Vidrio de reloj.
-HCL (ácido clorhídrico).
-NaOH (hidróxido de sodio, también conocido como sosa o potasa).
PROCEDIMIENTO: Primero, debemos crear el medio de cultivo agar agar (sino disponemos de él, ya que se puede comprar) a partir de 2,5 gramos de carne, 2,5 gramos de NaCL y 250 ml de agua destilada aproximadamente. A continuación, lo mezclamos todo en un vaso de precipitado, lo calentamos y lo dejamos enfriar dando como resultado una "pasta" gelatinosa. Después, sin dejar de enfriar el agar agar del todo, lo metemos en la placa de pétri; para realizar este procedimiento debemos coger (entre dos personas) 2 placas de pétri (una superpuesta a la otra), la abrimos un poco cerca de un mechero de alcohol (para consumir el oxígeno del interior) e introducimos el agar agar que lo dejamos enfriar un día. Ahora, cogemos las muestras de distintas zonas del instituto (incluída la muestra de la garganta) con los bastoncillos y con el agar frío extendemos con suavidad sin crear surcos (también podemos realizar varias germinaciones de una misma muestra en el medio de cultivo para conseguir más bacterias). Dejamos unos días para que germine y lo observamos con una lupa binocular.
Este sería el resultado (más o menos conseguido).
CONCLUSIONES: Práctica compleja, larga y laboriosa ya que tuvimos que trabajar en ella durante unos días y no nos salió como esperabamos (no germinaron en mucha cantidad ni tamaño). Aún así, fue divertida sobretodo (cuando tuvimos que coger la muestra de la garganta potque provoca arcadas).
MATERIAL:
-Balanza.
-Mechero de alcohol.
-Probeta.
-Lupa binocular.
-Matraz.
-Agitador.
-Papel de filtro.
-Tubo de ensayo.
-Placa de pétri.
-Vaso de precipitados.
-Bastoncillo.
-Vidrio de reloj.
-HCL (ácido clorhídrico).
-NaOH (hidróxido de sodio, también conocido como sosa o potasa).
PROCEDIMIENTO: Primero, debemos crear el medio de cultivo agar agar (sino disponemos de él, ya que se puede comprar) a partir de 2,5 gramos de carne, 2,5 gramos de NaCL y 250 ml de agua destilada aproximadamente. A continuación, lo mezclamos todo en un vaso de precipitado, lo calentamos y lo dejamos enfriar dando como resultado una "pasta" gelatinosa. Después, sin dejar de enfriar el agar agar del todo, lo metemos en la placa de pétri; para realizar este procedimiento debemos coger (entre dos personas) 2 placas de pétri (una superpuesta a la otra), la abrimos un poco cerca de un mechero de alcohol (para consumir el oxígeno del interior) e introducimos el agar agar que lo dejamos enfriar un día. Ahora, cogemos las muestras de distintas zonas del instituto (incluída la muestra de la garganta) con los bastoncillos y con el agar frío extendemos con suavidad sin crear surcos (también podemos realizar varias germinaciones de una misma muestra en el medio de cultivo para conseguir más bacterias). Dejamos unos días para que germine y lo observamos con una lupa binocular.
Este sería el resultado (más o menos conseguido).
CONCLUSIONES: Práctica compleja, larga y laboriosa ya que tuvimos que trabajar en ella durante unos días y no nos salió como esperabamos (no germinaron en mucha cantidad ni tamaño). Aún así, fue divertida sobretodo (cuando tuvimos que coger la muestra de la garganta potque provoca arcadas).
MUCOSA BUCAL
OBJETIVO: Obsevación de las células de la mucosa bucal al microoscopio.
MATERIAL:
-Porta y Cubre.
-Bastoncillos.
-Pocillo de tinción.
-Frasco lavador.
-Papel de filtro.
-Agua destilada.
-Mechero de alcohol.
-Pinzas.
-Azul de metileno.
-Microoscopio
PROCEDIMIENTO: Cogemos un bastoncillo y extraemos una muestra de los carrillos la cual extendemos en el portaobjetos. A continuación, aplicamos unas gotas de agua al porta y la secamos con el mechero de alcohol (teniendo cuidado con no quemar las células, para ello, retiraremos de vez en cuando la muestra del fuego y colocando el porta sobre la mano para comprobar si esta demasiado caliente). Después, incluimos el azul de metileno (para teñir la muestra), dejando unos minutos para que se tiña y limpiar con un pocillo de tinción y agua. Finalmente, colocamos el cubreobjetos y realizamos el Squash(El Squash consiste en utilizar el papel de filtro sobre la muestra y apretando con más o menos fuerza, sin romper el porta, para unificar la muestra) y lo llevamos al microoscopio.
CONCLUSIÓN: Práctica divertida (sobretodo viendo como los compañeros hacian muecas cuando se pasanban el bastoncillo por el carrillo) e "instructiva".
MATERIAL:
-Porta y Cubre.
-Bastoncillos.
-Pocillo de tinción.
-Frasco lavador.
-Papel de filtro.
-Agua destilada.
-Mechero de alcohol.
-Pinzas.
-Azul de metileno.
-Microoscopio
PROCEDIMIENTO: Cogemos un bastoncillo y extraemos una muestra de los carrillos la cual extendemos en el portaobjetos. A continuación, aplicamos unas gotas de agua al porta y la secamos con el mechero de alcohol (teniendo cuidado con no quemar las células, para ello, retiraremos de vez en cuando la muestra del fuego y colocando el porta sobre la mano para comprobar si esta demasiado caliente). Después, incluimos el azul de metileno (para teñir la muestra), dejando unos minutos para que se tiña y limpiar con un pocillo de tinción y agua. Finalmente, colocamos el cubreobjetos y realizamos el Squash(El Squash consiste en utilizar el papel de filtro sobre la muestra y apretando con más o menos fuerza, sin romper el porta, para unificar la muestra) y lo llevamos al microoscopio.
CONCLUSIÓN: Práctica divertida (sobretodo viendo como los compañeros hacian muecas cuando se pasanban el bastoncillo por el carrillo) e "instructiva".
sábado, 14 de noviembre de 2009
LOS ANLAGÉSICOS
OBJETIVO: Estudiaremos diferentes medicamentos para saber cual contiene ácido acetil salicílico.
PROCEDIMIENTO: Primero deberemos fabricar un Lugol (una solución con yodo diatómico con yoduro de potasio en agua destilada, la cual no teníamos) para ello necesitaremos:
I (yodo) = 5 gramos.
KI (yoduro de potasio) = 10 gramos.
Agua destilada = 50 ml.
Balanza, vaso de precipitados, vidrio de reloj, almidón, 6 tubos de ensayo (con gradilla), Benedict (oto reactivo), indicador de pH, medicamentos comunes, varilla de vidrio, filtro, probeta, geribga, mortero, embudo y mechero de alcohol.
A continuación, pesamos todos los productos en la balanza con el vidrio de reloj y añadimos agua destilada (10 ml) en vaso de precipitados donde lo mezclamos todo y ponemos el agua sobrante también. Finalmente, filtramos sobre una probeta graduada y comprobamos si funciona el Lugol con el almidón.
Ahora, pesamos los medicamentos, cogemos de cada uno 0,5 gramos, las machacamos con el mortero y realizamos disoluciones con cada medicamento con 10 ml de agua:
Aspirina 0,85 gramos.
1ª Pastilla desconocida 0,55 gramos.
2ª Pastilla desconocida 1,60 gramos.
Luego, cogemos 3 ml de cada disolución,las colocamos en los tubos de ensayo, las pasamos por el Lugol y el Benedict y observamos su color (si es de color violeta contiene ácido acetil salicílico) y pasamos el indicador de pH (a continuación, el color con el Lugol y después con el Benedict, respectivamente)
Aspirina = violeta oscuro y negro con un pH entre 5 y 6.
1ª Pastilla desconocida = también era violeta oscuro y negro con pH bajo(no tuvimos mucho tiempo para verlo, aún así, era una sustancia ácida).
2ª Pastilla desconocida = amarillo claro y amarillo con pH 7 (neutro).
CONCLUSIÓN:Práctica muy laboriasa ya que tuvimos que trabajar durante 2 días y no nos dio tiempo para sacar fotografías (debido a el poco tiempo). Además, la escasa colaboración del grupo de trabajo nos atrasó más de lo debido. Pese a todo, hemos descubierto que medicamentos contenian el "salicílico" y cuales no (aunque no sepamos cuales eran sus nombres).
PROCEDIMIENTO: Primero deberemos fabricar un Lugol (una solución con yodo diatómico con yoduro de potasio en agua destilada, la cual no teníamos) para ello necesitaremos:
I (yodo) = 5 gramos.
KI (yoduro de potasio) = 10 gramos.
Agua destilada = 50 ml.
Balanza, vaso de precipitados, vidrio de reloj, almidón, 6 tubos de ensayo (con gradilla), Benedict (oto reactivo), indicador de pH, medicamentos comunes, varilla de vidrio, filtro, probeta, geribga, mortero, embudo y mechero de alcohol.
A continuación, pesamos todos los productos en la balanza con el vidrio de reloj y añadimos agua destilada (10 ml) en vaso de precipitados donde lo mezclamos todo y ponemos el agua sobrante también. Finalmente, filtramos sobre una probeta graduada y comprobamos si funciona el Lugol con el almidón.
Ahora, pesamos los medicamentos, cogemos de cada uno 0,5 gramos, las machacamos con el mortero y realizamos disoluciones con cada medicamento con 10 ml de agua:
Aspirina 0,85 gramos.
1ª Pastilla desconocida 0,55 gramos.
2ª Pastilla desconocida 1,60 gramos.
Luego, cogemos 3 ml de cada disolución,las colocamos en los tubos de ensayo, las pasamos por el Lugol y el Benedict y observamos su color (si es de color violeta contiene ácido acetil salicílico) y pasamos el indicador de pH (a continuación, el color con el Lugol y después con el Benedict, respectivamente)
Aspirina = violeta oscuro y negro con un pH entre 5 y 6.
1ª Pastilla desconocida = también era violeta oscuro y negro con pH bajo(no tuvimos mucho tiempo para verlo, aún así, era una sustancia ácida).
2ª Pastilla desconocida = amarillo claro y amarillo con pH 7 (neutro).
CONCLUSIÓN:Práctica muy laboriasa ya que tuvimos que trabajar durante 2 días y no nos dio tiempo para sacar fotografías (debido a el poco tiempo). Además, la escasa colaboración del grupo de trabajo nos atrasó más de lo debido. Pese a todo, hemos descubierto que medicamentos contenian el "salicílico" y cuales no (aunque no sepamos cuales eran sus nombres).
lunes, 9 de noviembre de 2009
MÉTODOS DE DIAGNÓSTICO
OBJETIVO: En esta práctica vamos a estudiar los distintos tipos de instrumentos de diagnóstico que utilizaria un médico normalmente.
MATERIAL:
1) Termómetro.
2) Esfignomanometro (tensiometro).
3) Fonendoescopio.
FUNDAMENTO TEÓRICO:
1) Termómetro: El termómetro se emplea para medir la temperatura corpolar de los pacientes. Dependiendo de la temperatura a la que se encuentre el paciente tendremos diferentes casos:
Entre 36 y 37 ºC normal
Entre 37 y 38 ºC fiebre leve
Entre 38 y 40 ºC fiebre alta
Más de 40 ºC fiebre muy alta (levar a un hospital)
2) Esfignomanómetro: También llamado vulgarmente tensiometro y se utiliza para medir la tensión arterial (T.A), la presión que ejerce la sangre contra la pared de las arterias. Esta presión es imprescindible para que circule la sangre por los vasos sanguíneos y aporte el oxígeno y los nutrientes a todos los órganos del cuerpo para que puedan funcionar.
Los valores normales de presión arterial varían entre 90/60 y 120/80 mmHg ( T.A óptima).Valores por encima de 130/90 mm de mercurio son indicativos de hipertensión o presión arterial alta y por debajo de 90/60 son indicativos de hipotensión o presión arterial baja. Estos valores dependen de la edad (se incrementan con el envejecimiento) y del sexo (son menores en las mujeres). Los valores más bajos se registran durante el sueño.
3) Estetoscopio: También llamado fonendoscopio, se emplea para auscultación de los ruidos cardiácos o respiratorios ( o para los ruidos intestinales o para encontrar un soplo en una arteria o vena ).
CONCLUSIÓN: En esta páctica observamos los instrumentos básicos que de saber manejar un buen médico.
MATERIAL:
1) Termómetro.
2) Esfignomanometro (tensiometro).
3) Fonendoescopio.
FUNDAMENTO TEÓRICO:
1) Termómetro: El termómetro se emplea para medir la temperatura corpolar de los pacientes. Dependiendo de la temperatura a la que se encuentre el paciente tendremos diferentes casos:
Entre 36 y 37 ºC normal
Entre 37 y 38 ºC fiebre leve
Entre 38 y 40 ºC fiebre alta
Más de 40 ºC fiebre muy alta (levar a un hospital)
2) Esfignomanómetro: También llamado vulgarmente tensiometro y se utiliza para medir la tensión arterial (T.A), la presión que ejerce la sangre contra la pared de las arterias. Esta presión es imprescindible para que circule la sangre por los vasos sanguíneos y aporte el oxígeno y los nutrientes a todos los órganos del cuerpo para que puedan funcionar.
Los valores normales de presión arterial varían entre 90/60 y 120/80 mmHg ( T.A óptima).Valores por encima de 130/90 mm de mercurio son indicativos de hipertensión o presión arterial alta y por debajo de 90/60 son indicativos de hipotensión o presión arterial baja. Estos valores dependen de la edad (se incrementan con el envejecimiento) y del sexo (son menores en las mujeres). Los valores más bajos se registran durante el sueño.
3) Estetoscopio: También llamado fonendoscopio, se emplea para auscultación de los ruidos cardiácos o respiratorios ( o para los ruidos intestinales o para encontrar un soplo en una arteria o vena ).
CONCLUSIÓN: En esta páctica observamos los instrumentos básicos que de saber manejar un buen médico.
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